RESUMEN:
Agave colimana, A. convallis y A. guadalajarana son especies que se encuentran amenazadas. Sus poblaciones se encuentran en peligro, severamente fragmentadas y con una gran disminución de individuos maduros. Debido a su escasez, es importante encontrar métodos eficientes para la obtención de plantas que puedan utilizarse en investigación o aprovechamiento racional.
Se logró la propagación in vitro mediante meristemos cultivados en medio de cultivo Murashige y Skoog, con 30 g L-1 de sacarosa, y 8 g L-1 de agar y suplementado con las citocininas 6-bencilaminopurina (BA), o 6-(γ,γ-dimetilalilamino), purina (2iP) y metatopolina. El mejor tratamiento para la inducción de brotes por explante consistió en MS suplementado con 1 mg L-1 metatopolina para A. colimana, 1 mg L-1 BA para A. guadalajarana y 2 mg L-1 BA para A. convallis. Aunque en este última no hay diferencia estadística con el tratamiento de 1 mg L-1, fue la que tuvo un crecimiento más tardío en todos los tratamientos de las tres especies. Se observaron otras respuestas interesantes, como la formación de masas de brotes indiferenciados, e inducción de raíces con 2iP y sin reguladores de crecimiento vegetal (RCV) en algunos tratamientos.
En cuanto a las respuestas morfogenéticas, se escogió el mejor tratamiento de citocinina según la especie y fue posteriormente combinado con la auxina picloram en proporciones 1:1, 1:2 y 2:1. Se observó la formación de tejido calloso en todos los tratamientos de las tres especies. Finalmente se procedió a la aclimatación y transferencia a suelo de plantas generadas in vitro. Para esto fueron transferidas a charolas con sustrato de turba PeatMoss y agrolita en proporción 1:1. Las raíces fueron impregnadas con polvo enraizador (Raizone) o biofertilizante micorrizico en polvo Glomus intraradices. Se evaluó la supervivencia después de 3 semanas resultando en porcentajes mínimos de 81.25% y 75% respectivamente
ABSTRACT:
Agave colimana, A. convallis and A. guadalajarana are threatened species, Their populations are endangered, severely fragmented, and with a significant decrease in mature individuals. Due to their scarcity, it is important to find efficient methods for obtaining plants that can be used in research or rational exploitation.
In vitro propagation through meristems cultivated in semi-solid media was achieved using Murashige and Skoog culture medium, with 30 g L⁻¹ sucrose and 8 g L⁻¹ agar, and supplemented with the cytokinins 6-benzylaminopurine (BA), 6-(γ,γ-dimethylallylamino)purine (2iP), and metatopolin. The best treatment for shoot induction per explant consisted of MS medium supplemented with 1 mg L⁻¹ metatopolin for A. colimana, 1 mg L⁻¹ BA for A. guadalajarana, and 2 mg L⁻¹ BA for A. convallis. Although in the latter there was no statistical difference with the 1 mg L⁻¹ treatment, it exhibited the slowest growth across all treatments in the three species. Other interesting responses were observed, such as the formation of undifferentiated shoot masses and root induction with 2iP and without plant growth regulators (PGR) in some treatments.
Regarding morphogenetic responses, the best cytokinin treatment for each species was selected and subsequently combined with the auxin picloram in 1:1, 1:2, and 2:1 ratios. Callus tissue formation was observed in all treatments for the three species. Subsequently, in vitro generated plants were acclimatized and transferred to trays with a 1:1 peat moss and agrolite substrate. Roots were impregnated with rooting powder (Raizone) or Glomus intraradices mycorrhizal biofertilizer powder. Survival was evaluated after 3 weeks, resulting in minimum percentages of 81.25% and 75%, respectively.
